banner
Дом / Новости / Митохондриальный комплексом раскрывает качество
Новости

Митохондриальный комплексом раскрывает качество

Jun 03, 2023Jun 03, 2023

Nature, том 614, страницы 153–159 (2023 г.) Процитировать эту статью

29 тысяч доступов

7 цитат

190 Альтметрика

Подробности о метриках

Митохондрии играют решающую роль в клеточной энергетике, метаболизме, передаче сигналов и контроле качества1,2,3,4. Они содержат около 1000 различных белков, которые часто собираются в комплексы и суперкомплексы, такие как дыхательные комплексы и пребелковые транслоказы1,3,4,5,6,7. Охарактеризован состав митохондриального протеома1,3,5,6; однако организация митохондриальных белков в стабильные и динамические сборки плохо изучена для основных частей протеома1,4,7. Здесь мы сообщаем о количественном картировании сборок митохондриальных белков с использованием комплексомного профилирования более 90% митохондриального протеома дрожжей, называемого MitCOM. Анализ набора данных MitCOM разрешает >5200 белковых пиков, в среднем по шесть пиков на белок, и демонстрирует заметную сложность сборок митохондриальных белков с различным внешним видом для дыхания, метаболизма, биогенеза, динамики, регуляции и окислительно-восстановительных процессов. Мы обнаруживаем интеракторы митохондриального рецептора цитозольных рибосом, каркасов запретина и дыхательных комплексов. Идентификация факторов контроля качества, действующих на входных воротах митохондриального белка, выявляет пути убиквитилирования, деубиквитилирования и деградации пребелка. Взаимодействие между пептидил-тРНК гидролазой Pth2 и входными воротами привело к выяснению конститутивного пути удаления пребелков. Набор данных MitCOM, доступный через интерактивную программу просмотра профилей, представляет собой комплексный ресурс для идентификации, организации и взаимодействия митохондриальных механизмов и путей.

Митохондрии – многофункциональные органеллы. Помимо своей роли в окислительном фосфорилировании и метаболических путях аминокислот, липидов, гема и железо-серных кластеров, они выполняют функции в клеточной передаче сигналов, окислительно-восстановительных процессах, контроле качества и апоптозе1,2,3. Большинство митохондриальных белков импортируются в качестве предшественников из цитозоля, тогда как около 1% белков синтезируются внутри органеллы. Митохондрии — это динамические органеллы, которые часто делятся и сливаются, и имеют характерную складчатую структуру своей внутренней мембраны. Дефекты митохондрий могут привести к тяжелым заболеваниям, особенно центральной нервной системы, обмена веществ и сердечно-сосудистой системы2,3.

Белковый состав митохондрий был определен в систематических протеомных исследованиях3,4,5 с охватом более 90% митохондриального протеома модельного организма пекарских дрожжей (Saccharomyces cerevisiae)6. Напротив, организация митохондриальных белков в белковые сборки, от стабильных комплексов и суперкомплексов до временных промежуточных продуктов сборки, понятна лишь частично. Для изучения организации митохондриального протеома были применены различные подходы, такие как аффинная очистка, нативный электрофорез, гель-фильтрация, градиенты плотности, сшивание и структурная биология. Каждый из этих подходов предоставил важную информацию об избранных митохондриальных комплексах, но ни один из них не дал исчерпывающего обзора ожидаемого большого количества различных белковых сборок.

Мы сообщаем о комплексном комплексоме дрожжевых митохондрий и связанных с ними белков с высоким разрешением, основанном на синем нативном электрофорезе в сочетании с криосрезами и масс-спектрометрическим анализом (csBN-MS)8,9. Мы систематически улучшали csBN-MS от разделения белков до расширенного обнаружения и количественного определения профилей белков, обеспечивая высокое разрешение и охват митохондриального комплексома (MitCOM)7,9,10. MitCOM покрывает более 90% достоверного митохондриального протеома и предоставляет обширную информацию о сборках митохондриальных белков и их количественном виде.

pyro-Glu (N-term Q), Glu->pyro-Glu (N-term E) and oxidation (M), fragment mass tolerance = ± 20 mmu, missed tryptic cleavage(s) = 1. Export filter settings were as follows: peptide-spectrum-match (PSM) FDR = 3%, minimum ion score = 0.5, grouping of related protein hits used the name of the predominant member. Exogenous contaminants (for example, keratins, trypsin, IgG chains) or protein identifications based on only one specific peptide in less than three slice samples were not considered further./p>

3.0.CO;2-W" data-track-action="article reference" href="https://doi.org/10.1002%2F%28SICI%291097-0061%28199907%2915%3A10B%3C963%3A%3AAID-YEA399%3E3.0.CO%3B2-W" aria-label="Article reference 45" data-doi="10.1002/(SICI)1097-0061(199907)15:10B3.0.CO;2-W"Article CAS Google Scholar /p>

3.0.CO;2-U" data-track-action="article reference" href="https://doi.org/10.1002%2F%28SICI%291097-0061%28199807%2914%3A10%3C953%3A%3AAID-YEA293%3E3.0.CO%3B2-U" aria-label="Article reference 46" data-doi="10.1002/(SICI)1097-0061(199807)14:103.0.CO;2-U"Article CAS Google Scholar /p>

3.0.CO;2-B" data-track-action="article reference" href="https://doi.org/10.1002%2F1097-0061%2820000630%2916%3A9%3C857%3A%3AAID-YEA561%3E3.0.CO%3B2-B" aria-label="Article reference 68" data-doi="10.1002/1097-0061(20000630)16:93.0.CO;2-B"Article CAS Google Scholar /p> 0.95 (grey dots) and used as distance measure for t-SNE. As a result, close co-localization on this map indicates potential association of the respective proteins into one or more complexes with a defined apparent molecular mass (i.e. localization in Fig. 1c). Top insets are stepwise zooms into the plot resolving a closely co-localized group of protein profile segments representing the main peak of succinate dehydrogenase (respiratory chain complex II) assembled from four subunits Sdh1–4. Note the exquisite co-localization and discrimination of these subunit even at highest magnification factors (indicated in each inset). Bottom insets are magnification of the framed windows in the central plot demonstrating close co-localization of profile segments of biochemically verified subunits of the indicated multi-protein complexes: SAM complex (left), prohibitin/m-AAA supercomplex (middle), assembly of Om14 with TOM (right)./p>1,800 kDa, the majority of metabolism-linked proteins, however, migrate below 320 kDa. The category protein biogenesis and turnover shows the highest abundance between 180 and 320 kDa in agreement with the sizes observed for major protein translocases62,70,71. Proteins involved in regulatory or redox processes are predominantly found in the low molecular mass range. The category morphology and dynamics displays a broad distribution with a maximum at an apparent mass of >3,200 kDa (Fig. 2) that includes the mitochondrial contact site and cristae organizing system (MICOS) and associated assemblies1,10./p>